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            一個抗體做IHC染色,如果不出效果,可能是哪些因素造成的?

            更新時間:2025-10-16      點擊次數:294

            一個抗體在免疫組化(IHC)實驗中不出效果(即無信號或信號弱)是一個非常常見的問題。這通常是由一整套復雜的因素共同導致的,需要進行系統性的排查。


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            以下是可能導致IHC染色失敗的常見原因,可以按照這個思路進行排查: 

            一、 樣本相關問題

            1.  固定不當:

            ●固定不及時:組織離體后未及時固定,導致抗原降解(內部蛋白酶分解)或彌散。

            ●固定時間過長或過短:

            - 過短:固定不充分,抗原保存不佳。

            - 過長:過度交聯會遮蔽抗原表位,尤其是甲醛固定,導致抗原無法被抗體識別。這種情況非常常見。

            ●固定劑不匹配:常用的是10%中性福爾林,但某些特定抗原可能需要特殊的固定液(如丙酮、乙醇等)。

            2.  包埋與切片:

            ●烤片溫度過高或時間過長:會破壞抗原。

            ●切片厚度:切片太厚可能導致抗體滲透不佳,背景加深;太薄可能導致目標抗原量不足。

            3.  內源性干擾物質:

            ●內源性過氧化物酶:在肝臟、腎臟等富含血細胞的組織中,未全部滅活的內源性過氧化物酶會導致背景染色,掩蓋特異性信號。

            ●內源性生物素:在某些組織(如肝、腎、腦)中含量高,如果使用生物素檢測系統,會產生嚴重的非特異性背景。

            4.  抗原修復不當(這是最常見的原因之一)

            ●未進行抗原修復:對于福爾林固定石蠟包埋的組織,絕大多數抗原都被交聯遮蔽,必須進行抗原修復。

            ●修復方法選擇錯誤:

            - 熱修復法:包括高壓法、微波法、水浴法。適用于大多數抗原。

            - 酶修復法:如胰蛋白酶、胃蛋白酶。適用于特定抗原。

            - 選擇錯誤的修復方法或修復液(如該用EDTA修復液卻用了枸櫞酸鹽修復液)可能導致修復效果不佳。

            ●修復條件不佳:修復時間、溫度、pH值不準確。修復不足會導致信號弱;修復過度可能導致背景染色或組織脫片。


             二、 抗體相關問題

            1.  抗體選擇不當:

            ●抗體特異性:抗體并非為其應用(IHC)而驗證。務必查閱說明書,確認該抗體已驗證可用于IHC,特別是您所用的物種和組織類型(如:人、小鼠、大鼠;石蠟切片/冰凍切片)。

            ●抗體克隆號:不同克隆號識別同一蛋白的不同表位,其IHC效果可能差異巨大。

            2.  抗體保存與使用:

            ●抗體失效:抗體反復凍融、存放溫度不當或超過有效期導致失活。

            ●稀釋度不當:

            - 濃度過低:信號弱或無信號。

            - 濃度過高:可能導致非特異性結合,背景高,信噪比差。

            ●孵育條件:孵育時間不足或溫度過低,抗體未能充分與抗原結合。


             三、 實驗操作與試劑問題

            1.  檢測系統問題:

            ●檢測試劑盒失效:HRP或AP酶失活,或顯色底物失效(例如DAB/AEC沉淀)。

            ●系統不匹配:使用了一抗種屬不匹配的二抗(如兔來源的一抗用了抗小鼠的二抗)。

            ●步驟遺漏或錯誤:例如忘了加二抗,或忘了加顯色底物。

            2.  封閉問題:

            ●封閉不充分:導致非特異性背景高,可能掩蓋弱陽性信號。

            ●封閉劑選擇不當:常用5% BSA或與二抗同源的非免疫血清。如果使用生物素系統,需要額外進行內源性生物素封閉。

            3.  洗滌問題:

            ●洗滌不充分:殘留的抗體或試劑會導致高背景。

            ●洗滌過度:可能會洗掉特異性結合的一抗/二抗。

            4.  顯色與復染:

            ●顯色時間過短:信號未充分顯現。

            ●顯色時間過長:背景過高,甚至出現假陽性。

            ●復染過深:掩蓋了弱陽性信號。


             四、 對照設置問題

            沒有設置正確的對照,就無法判斷問題是出在樣本、抗體還是操作上。

            ●陽性對照:使用已知表達該靶抗原的組織。如果陽性對照也無染色,說明整個實驗系統有問題。

            ●陰性對照:

            - 空白對照:只用PBS或抗體稀釋液代替一抗。如果此對照有染色,說明存在非特異性背景。

            - 同型對照:使用與一抗同種屬、同亞型的無關免疫球蛋白。用于排除抗體的Fc段非特異性結合。


            五、系統性排查建議(故障排除流程)

            當遇到無信號時,建議按以下步驟排查:

            1.  確認陽性對照:您的陽性對照組織染色是否正常?

            ●是 → 問題很可能在您的“待測樣本"本身(抗原不表達或含量極低)或“樣本處理"(固定、包埋)上。

            ●否 → 問題出在“實驗流程或試劑"上。

            2.  檢查陰性對照:您的陰性對照(無一抗)是否有染色?

            ●是 → 存在“高背景"。檢查:內源性酶是否全部滅活?封閉是否充分?抗體濃度是否過高?洗滌是否充分?

            ●否 → 背景干凈,但無信號,進入下一步。

            3.  回顧實驗流程:

            ●抗原修復:這是石蠟切片的首要排查點。嘗試更換修復方法(如從枸櫞酸鹽換為EDTA)或優化修復條件(時間、溫度)。

            ●抗體:重新查閱說明書,確認稀釋比、孵育時間和條件。使用更新鮮的抗體或新批次抗體進行測試。

            ●檢測系統:確認所有試劑(特別是二抗和DAB)均在有效期內,且正確配制。嘗試使用敏感性更高的檢測系統(如聚合物法)。

            4.  最終驗證:

            ●如果條件允許,可以使用“Western Blot"驗證該樣本中是否存在目標蛋白。

            ●嘗試使用另一種“已驗證有效的、不同克隆號"的抗體來檢測同一靶點。


            六、總結

            總之,IHC是一個多步驟的復雜實驗,需要精細的操作和系統性的優化。從樣本處理開始,每一步都可能成為成敗的關鍵。


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